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Biosupplies Consolidación Científica
Aplicaciones/Paneles IHQ en Oncología
IHQ · Oncología

Paneles IHQ en Oncología

Clasificación tumoral y diagnóstico de metástasis de origen desconocido

Introducción

Un panel inmunohistoquímico es un conjunto de anticuerpos seleccionados estratégicamente para resolver un problema diagnóstico específico. A diferencia del uso de un solo marcador, el panel permite identificar el origen histogenético de un tumor, clasificar su linaje (epitelial, mesenquimal, linfoide, neuroendocrino), determinar el perfil molecular necesario para la terapia dirigida y establecer el pronóstico. La clave está en construir paneles eficientes: comenzar con un panel mínimo de orientación (3–4 marcadores) e ir expandiendo selectivamente según los resultados, conservando tejido para pruebas moleculares complementarias. Biosupplies CC distribuye más de 130 anticuerpos primarios Bio SB —validados para tejido FFPE— que cubren los paneles oncológicos de mayor uso en Anatomía Patológica.

Puntos clave a considerar

  • El primer panel de orientación (CK amplio + LCA + S-100 + Vimentina) clasifica prácticamente cualquier tumor en carcinoma, linfoma, tumor melanocítico o mesenquimal.
  • El panel CK7/CK20 es el punto de partida universal para adenocarcinomas: CK7+/CK20- apunta a pulmón, mama, ovario; CK7-/CK20+ a colon; CK7+/CK20+ a vías biliares y páncreas.
  • Para tumores neuroendocrinos (NET): Sinaptofisina + Cromogranina A son los dos marcadores de primer panel; Ki-67 (MIB-1) determina el grado proliferativo (G1/G2/G3).
  • El panel hormonal en mama — ER + PR + HER-2 — es obligatorio en todo carcinoma invasor: guía la selección de terapia hormonal, trastuzumab o quimioterapia.
  • Preservar tejido es una regla de oro: en bloques pequeños de biopsia, un protocolo de cortes múltiples preplaneados evita agotar la muestra antes de completar el panel.
  • Cada panel debe incluir controles positivos y negativos en el mismo portaobjetos o como sección de tejido de control en paralelo para validar cada corrida.

Protocolo

Procedimiento paso a paso

1

Evaluación morfológica inicial (H&E)

Antes de iniciar cualquier panel IHQ, revisar detenidamente la H&E. Definir el patrón de crecimiento (sólido, glandular, papilar, difuso), la morfología celular (células grandes, pequeñas, fusiformes, redondas) y las características del estroma. Esta evaluación morfológica determina qué panel de orientación solicitar en primer lugar.

El 70–80% del diagnóstico en Anatomía Patológica se resuelve con la H&E; la IHQ confirma y precisa, no sustituye la morfología.
2

Panel de orientación (4 marcadores)

Solicitar: CK AE1/AE3 (carcinomas epiteliales) + CD45/LCA (linfomas) + S-100 (melanoma, tumores neurales) + Vimentina (mesenquimales). Este panel clasifica virtualmente cualquier tumor sólido en su linaje principal con solo 4 cortes. Evaluar antes de pedir marcadores más específicos.

3

Panel de origen tisular (carcinomas: CK7/CK20)

Si el tumor es CK AE1/AE3 positivo (carcinoma), usar el panel CK7/CK20 como segundo nivel. El patrón CK7+/CK20- orienta a origen pulmonar (agregar TTF-1), mamario (agregar ER/PR/HER-2), ovárico o endometrial. CK7-/CK20+ sugiere origen colorrectal (agregar CDX2). CK7+/CK20+ apunta a vías biliares, páncreas o gástrico.

El CK20 positivo aislado con CK7 negativo es altamente específico de adenocarcinoma colorrectal (sensibilidad >85%).
4

Panel de linfomas (tumores CD45+)

Ante un tumor CD45+ (linfoide): iniciar con CD20 (linfocitos B) y CD3 (linfocitos T). Si CD20+: completar con CD5, CD10, BCL-2, BCL-6, MUM-1 y Ki-67 para clasificar entre linfoma difuso de células B grandes (DLBCL), linfoma folicular, mantle cell o CLL/SLL. Si CD3+: completar con CD4/CD8 para orientar el subtipo T.

5

Panel de tumores neuroendocrinos (NET)

Si la morfología sugiere NET (células redondas uniformes con sal-y-pimienta nuclear): usar Sinaptofisina + Cromogranina A + Ki-67 (MIB-1). El Ki-67 es determinante para la gradación: G1 (<3%), G2 (3–20%), G3 (>20% o carcinoma neuroendocrino). Complementar con TTF-1 (si se sospecha origen pulmonar) o CDX2 (intestinal).

6

Panel hormonal en carcinoma de mama

En todo carcinoma invasor de mama: ER (SP1) + PR + HER-2 + Ki-67. El resultado determina el subtipo molecular (Luminal A: ER+/PR+/HER2-/Ki67<20%; Luminal B: ER+/HER2±/Ki67≥20%; HER2 enriquecido: ER-/HER2+; Triple negativo: ER-/PR-/HER2-) y guía el tratamiento sistémico.

HER-2 score 2+ (equívoco) debe complementarse con FISH/CISH para determinar la amplificación génica.
7

Interpretación, correlación y informe

Interpretar cada marcador en el contexto del patrón morfológico y la clínica. Definir localización del marcaje (nuclear, citoplasmático, membranoso) e intensidad (débil, moderado, fuerte). Un marcador positivo inesperado o negativo cuando se esperaba positivo requiere verificar la calidad del control y repetir si es necesario. El informe debe incluir el panel utilizado, los patrones de expresión y la conclusión diagnóstica integrando morfología e IHQ.

Preguntas frecuentes

Dudas técnicas comunes

¿Cuántos anticuerpos debo incluir en el primer panel?
El principio es la economía de tejido: comenzar con el mínimo necesario (3–4 anticuerpos) para resolver la pregunta diagnóstica inicial. Usar los resultados para guiar el siguiente panel. En biopsias pequeñas, preplaning los cortes para reservar secciones adicionales antes de iniciar. Un panel de 10 marcadores solicitado sin una hipótesis morfológica previa desperdicia tejido y dificulta la interpretación.
¿Cómo abordar una metástasis de origen desconocido?
El algoritmo clásico inicia con el panel de orientación (CK/LCA/S100/Vim) para definir el linaje. Luego CK7/CK20 para adenocarcinomas. Incorporar marcadores de órgano-sitio según el patrón: TTF-1 (pulmón/tiroides), PSA (próstata), CDX2 (colon/intestino delgado), PAX8 (riñón/ovario/tiroides), WT1 (mesotelio/ovario). En la mayoría de los casos se puede establecer el sitio primario más probable con 6–8 marcadores bien seleccionados.
¿Qué diferencia hay entre anticuerpos RTU y concentrados de Bio SB?
Los RTU (Ready-To-Use) están predilüidos a la concentración óptima establecida por el fabricante — se aplican directamente sin preparación adicional, reduciendo variables preanalíticas. Los concentrados requieren dilución en el laboratorio, lo que permite ajustes según el tejido específico o el protocolo del equipo, pero añaden un paso de variabilidad. Para laboratorios con menor volumen o con procesos manuales, los RTU simplifican el flujo de trabajo y garantizan reproducibilidad.
¿Con qué frecuencia debo revisar la dilución óptima de un anticuerpo?
Se recomienda titulación en tres situaciones: al recibir un nuevo lote del anticuerpo, al cambiar el protocolo de recuperación antigénica y cuando los controles internos muestren cambios en la intensidad de tinción. Un cambio de dilución de ±una dilución (ejemplo: de 1:100 a 1:200) puede significar la diferencia entre un resultado diagnóstico y un resultado equívoco.

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