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Biosupplies Consolidación Científica
Aplicaciones/Receptores Hormonales y HER-2
IHQ · Mama

Receptores Hormonales y HER-2

Panel obligatorio en carcinoma de mama invasor

Introducción

El panel de receptores hormonales (ER y PR) junto con HER-2 y el índice proliferativo Ki-67 constituye el estudio inmunohistoquímico más solicitado en patología oncológica mundial. En carcinoma de mama invasor, este panel no es opcional: determina el subtipo molecular del tumor (Luminal A, Luminal B, HER-2 enriquecido o Triple Negativo), define qué pacientes se benefician de terapia hormonal (tamoxifeno, inhibidores de aromatasa), quimioterapia o terapia dirigida anti-HER-2 (trastuzumab). En Venezuela, donde el cáncer de mama es el tumor maligno más frecuente en mujeres, un panel correctamente ejecutado e interpretado puede ser determinante en la supervivencia de la paciente. Biosupplies CC distribuye los anticuerpos Bio SB SP1 (ER), 1E6 (PR), 4B5 (HER-2) y SP6 (Ki-67), todos validados para tejido FFPE y con reconocimiento internacional en los programas EQA NordiQC y UKNEQAS.

Puntos clave a considerar

  • ER clon SP1 y PR clon 1E6 son los clones recomendados por ASCO/CAP 2020 como primera opción para receptor estrogénico y progesterona respectivamente.
  • Un resultado ER positivo se define con ≥1% de núcleos tumorales con tinción de cualquier intensidad (criterio ASCO/CAP 2020).
  • HER-2 score 2+ (equívoco) requiere confirmación por FISH/CISH para determinar la amplificación génica antes de indicar trastuzumab.
  • Ki-67 ≥20% define Luminal B cuando ER es positivo y HER-2 negativo; el umbral puede variar según el consenso internacional vigente.
  • La tinción de HER-2 debe ser membranosa completa e intensa (3+) para considerarse positiva; el patrón citoplasmático no es evaluable.
  • Incluir controles positivos y negativos en cada corrida del panel, idealmente en el mismo portaobjetos que la muestra.

Protocolo

Procedimiento paso a paso

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Consideraciones preanalíticas críticas

La fijación es el factor más crítico para la reproducibilidad del panel. El tiempo óptimo en NBF al 10% para carcinoma de mama es 6–72 horas para biopsias core y 6–48 horas para piezas quirúrgicas. Una fijación insuficiente (<6 h) produce resultados falsamente negativos para ER/PR; una fijación excesiva (>72 h) también puede reducir la antigenicidad. Documentar el tiempo de isquemia (tiempo entre extirpación y fijación) y el tiempo de fijación para cada caso.

El tiempo de isquemia en frío debe ser <1 hora para garantizar la integridad antigénica según ASCO/CAP.
2

Recuperación antigénica

ER (SP1) y PR (1E6): HIER en tampón EDTA pH 9.0, 95–98 °C durante 20 min. HER-2 (4B5): HIER en tampón citrato pH 6.0 o EDTA pH 9.0 según el protocolo del laboratorio (verificar con los datos técnicos Bio SB). Ki-67 (SP6): HIER en tampón EDTA pH 9.0 o citrato pH 6.0. Dejar enfriar 20 min a temperatura ambiente antes de continuar.

Cada anticuerpo puede tener condiciones de HIER ligeramente distintas. Consultar siempre la ficha técnica del clon específico.
3

Incubación con anticuerpos primarios

Aplicar los anticuerpos RTU Bio SB directamente sin preparación adicional. Incubar en cámara húmeda a temperatura ambiente durante 30–60 min, o a 4 °C toda la noche según el protocolo del laboratorio. Lavar 3 × 5 min con PBS/TBS. Para mayor reproducibilidad, mantener constantes el tiempo y la temperatura de incubación entre corridas.

4

Sistema de detección y revelado

Aplicar sistema de detección HRP-polímero (Cancer Diagnostics). Incubar según indicaciones del fabricante. Revelar con DAB hasta obtener color marrón-dorado en el antígeno (generalmente 3–8 min bajo control microscópico). Para HER-2: verificar que la tinción es exclusivamente membranosa; el fondo citoplasmático puede indicar un problema técnico en la detección.

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Contratinción, deshidratación y montaje

Contrastar con Hematoxilina de Mayer (30–60 seg). Deshidratar en series de etanol, aclara en xileno, montar con resina permanente. Para ER/PR y Ki-67, la tinción positiva debe ser nuclear; para HER-2, debe ser membranosa completa.

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Lectura e interpretación

ER y PR: estimar el porcentaje de núcleos tumorales positivos con cualquier intensidad (negativo: <1%, positivo débil: 1–10%, positivo: >10%). Registrar también la intensidad media (débil/moderada/fuerte). HER-2: aplicar el score ASCO/CAP: 0 (sin tinción o en <10% de células), 1+ (tinción membranosa incompleta en ≥10%), 2+ (tinción membranosa completa en ≥10% con intensidad moderada), 3+ (tinción membranosa completa e intensa en ≥10%). Ki-67: estimar el % de núcleos tumorales con cualquier tinción nuclear.

Para HER-2, evaluar solo el componente invasor, no in situ. El score debe obtenerse en la zona de mayor tinción.

Preguntas frecuentes

Dudas técnicas comunes

¿Por qué ER positivo con <1% de células se reporta como negativo?
Antes del consenso ASCO/CAP 2010, algunos laboratorios reportaban positivo con cualquier célula teñida. La evidencia clínica demostró que pacientes con <1% de positividad no se benefician de terapia hormonal de manera significativa, por lo que el umbral de 1% se estableció como punto de corte clínicamente relevante. Reportar como negativo un resultado con 0.5% evita un tratamiento hormonal sin beneficio demostrado.
¿Qué significa un HER-2 2+ (equívoco) y qué sigue?
Un HER-2 2+ significa que la IHQ no puede determinar con certeza si hay sobrexpresión. Se requiere confirmación por FISH (fluorescencia in situ) o CISH (cromogénica in situ) para detectar la amplificación del gen HER-2. Solo con amplificación confirmada se indica terapia anti-HER-2. En Venezuela, muchos centros remiten la muestra a laboratorios de referencia para FISH cuando el resultado IHQ es 2+.
¿El Ki-67 es reproducible entre laboratorios?
El Ki-67 es el marcador IHQ con mayor variabilidad inter-laboratorio. Los factores que más afectan la reproducibilidad son: el clon del anticuerpo (SP6 y MIB-1 son los más validados), las condiciones de recuperación antigénica, el método de cuantificación (visual vs. digital) y el área del tumor evaluada (hotspot vs. media global). Los programas EQA internacionales como NordiQC monitorean este marcador y proporcionan guías de optimización.
¿Cuál es la clasificación molecular basada en IHQ?
Luminal A: ER+ y/o PR+, HER-2 negativo, Ki-67 <20% (bajo grado proliferativo). Luminal B-HER2 negativo: ER+ y/o PR+, HER-2 negativo, Ki-67 ≥20%. Luminal B-HER2 positivo: ER+ y/o PR+, HER-2 positivo (cualquier Ki-67). HER-2 enriquecido: ER negativo, PR negativo, HER-2 positivo. Triple Negativo: ER negativo, PR negativo, HER-2 negativo. Esta clasificación IHQ es un sustituto del perfil molecular genómico y guía el tratamiento sistémico.

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